Biología (plan 1997) 2024-1

Quinto Semestre, Taller Nivel 1

Estimadas alumnas y alumnos, bienvenidos a la presentación del Taller 1: La medicina regenerativa y la ingeniería tisular en la generación de tejidos de novo.

Grupo 5634 para el semestre 2024-1.

Presentación del taller en la Facultad: Cubierto 3 de agosto 2023

Gracias por asistir a la presentación del taller.

Entrevista, aclaración de dudas con los interesados en el taller: Cubierta 4 de agosto

Grupo cerrado con los alumnos aceptados. Si alguno decide darse de baja , por favor avisar para que otro alumno interesado pueda ocupar su lugar.

Gracias y nos vemos en el INRLGII . Recibirán una invitación por telegram con las indicaciones para poder ingresar al Instituto.

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Horario: miércoles y viernes de 8:00 a 10:00. Actividades híbridas de acuerdo con el calendario.

PRESENTACIÓN DEL CURSO:

Presentación oral de los del talleres Nivel I correspondiente al semestre 2024-1. Se realizará el día 2 de agosto de 2023 en el Anfiteatro Alfredo Barreradel Conjunto Amoxcalli de la Facultad de Ciencias en el horario de 12:00 pm

SEDES

• Instituto Nacional de Rehabilitación Luis Guillermo Ibarra Ibarra. www.inr.gob.mx Calzada México Xochimilco 289. México. CDMx. Cerca del Estadio Azteca. . Estación del tren ligero extación Xomali. Unidad de Ingeniería de Tejidos Terapia Celular y Medicina Regnerativa. 55-5999- 1000 ext.19601.
• 

• IPN

• Instituto de Fisiología Celular, Universidad Nacional Autónoma de México. https://www.ifc.unam.mx/ Cto. Exterior s/n, C.U., Coyoacán, 04510 Ciudad de México, CDMX

• Facultad de Ciencias https://www.fciencias.unam.mx/ Universidad Nacional Autónoma de México, UNAM, Av. Universidad 3000, Circuito Exterior S/N, Delegación Coyoacán, C.P. 04510, Ciudad Universitaria, D.F. México

PARA LA PRIMERA SESIÓN nos vemos el 18 de agosto a las 8:00 am. En el INR, salón Temazcal II, es importante llevar bata.

La entrada al INR será por la puerta principal, localizada en la av. México-Xochimilco. Favor de llevar su credencial de la facultad para que se identifiquen y les den el acceso. Lleguen por lo menos 15 minutos antes, pues el acceso es restringido.

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Objetivos Generales:

1. Presentar al estudiante el panorama actual de la situación de la medicina regenerativa e ingeniería tisular en México.
2. Que el alumno comprenda la complejidad de los aspectos biológicos, físicos y químicos involucrados en la generación de neotejidos.
3. Proporcionar al estudiante el marco conceptual y las herramientas prácticas para la evaluación de los neotejidos.
4. Proveer al estudiante de las capacidades técnicas, críticas y analíticas para realizar el análisis de los cultivos celulares y su interacción con estructuras tridimensionales (3D).
5. Desarrollar en el estudiante un enfoque crítico para que pueda establecer prioridades en proyectos de investigación que ayuden a resolver las necesidades actuales de información en el campo de la medicina regenerativa en México, enfocado a la participación del biólogo, físico y matemático.
6. Desarrollar pruebas en biochips con células humanas para personalizar y agilizar los estudios a realizar.
7. Que el alumno conozca los conceptos básicos sobre las células troncales, el uso de estas células en la medicina regenerativa y los organismos modelo de regeneración utilizados en investigación.

Temario: Nivel I. La medicina regenerativa y la ingeniería tisular en la generación de tejidos de novo.

Unidad 1: Presentación del taller y actividades de inducción

• Inducción a temas, conceptos y líneas de investigación
• Procesos y formas de titulación
• Búsqueda bibliográfica asertiva

Unidad 2: Introducción a la Ingeniería de Tejidos

• Historia de la ingeniería de tejidos y la medicina regenerativa
• Organización de las células
• Biología de las células en cultivo
• Metabolismo energético y función mitocondrial durante la regeneración celular
• Histología de piel y hueso
• Bioseguridad en el laboratorio
• Organismos modelo de regeneración
• Biomateriales naturales y sintéticos/Caracterización de materiales

Unidad 3: Proyectos de aplicación clínica en el INR.

• Transplante mitocondrial
• ROS, antioxidantes y trasplantes
• Explantes, líneas celulares, cultivos organotípicos, cultivos 3D
• Nanomedicina
• Regeneración de hueso
• Regeneración de la piel

Unidad 4: Proyecto experimental

• Elección de tema para tesis
• Desarrollo de título tentativo, objetivos de trabajo y pregunta de investigación
• Desarrollo de cronograma de actividades

Dinámica general del curso:

1. En el primer nivel del taller el alumnado tendrá una inducción hacía las líneas de investigación en las que podrá realizar su trabajo de titulación. Además, se le proporcionarán las herramientas de búsqueda y escritura para que desde el nivel uno del taller construya su título, objetivos y pregunta de investigación.
2. Se les guiará a través de clases para que adquieran los conocimientos básicos y especializados para el desarrollo de su marco teórico y experimental.
3. El alumnado revisará detalladamente el acervo bibliográfico previamente establecido con el apoyo y a solicitud de los profesores.
4. El alumnado desarrollará su protocolo de investigación por semestre (3 en total), y entregarán los diferentes bloques para su revisión a los profesores en las fechas establecidas.
5. En conjunto con su asesor, cada alumno definirá un acervo bibliográfico de 20 a 35 artículos, el cuál será para el desarrollo de su protocolo.
6. El alumnado que desarrolle actividades experimentales se pondrá de acuerdo con su asesor en los horarios para asistir al laboratorio de acuerdo a las medidas sanitarias de cada institución y atendiendo las indicaciones de la facultad.

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Bibliografía básica:

1. Al-Khaateb M, Haddadin K, Haddadin W, Al-Bdour M, Abulail A. Results of auricular reconstruction with autogenous costal cartilage grafts at King Hussein Medical Center. J R Med Serv 2011; 18 3: 74-79
2. Charruyer A., Ghadially R., Stem Cells and tissue-Engineered Skin. 2009. Skin Pharmacology Physiology. pp 55-62.
3. Clemente Ibarra, David Garciadiego, Valentín Martínez, Cristina Velasquillo. Ingeniería de Tejidos y Osteoartritis. Reumatología Clínica. 2007 3: S19­22
4. Cristina Velasquillo, Eduardo A. Galue, Lourdes Rodriquez, Clemente Ibarra, L. Guillermo Ibarra­Ibarra. Skin 3D Bioprinting. Applications in Cosmetology Journal of Cosmetics, Dermatological Sciences and Applications, 2013, 3, 85­89.
5. Fonseca­García A, Mota­Morales JD, Quintero­Ortega IA, García­Carvajal ZY, Martínez­López V, Ruvalcaba E, Landa­Solís C, Solis L, Ibarra C, Gutiérrez MC, Terrones M, Sanchez IC, Del Monte F, Velasquillo MC, Luna­Bárcenas G. Effect of doping in carbon nanotubes on the viability of biomimetic chitosan­carbon nanotubes­hydroxyapatite scaffolds. J Biomed Mater Res A. 2013 Jul 27. doi: 10.1002/jbm.a.34893.
6. Garnica­Palafox IM, Sánchez­Arévalo FM, Velasquillo C, García­Carvajal ZY, García­López J, Ortega­Sánchez C, Ibarra C, Luna­Bárcenas G, Solís­Arrieta L. Mechanical and structural response of a hybrid hydrogel based on chitosan and poly(vinyl alcohol) cross­linked with epichlorohydrin for potential use in tissue engineering. J Biomater Sci Polym Ed. 2014;25(1):32­50.2013. E2013 Sep 5.
7. Guo Q, Lu X, Xue Y, Zheng H, Zhao X, Zhao H. . A new candidate substrate for cell- matrix adhesion study: the acellular human amniotic matrix. J Biomed Biotechnol. 2012;2012
8. Ibarra C, Izaguirre A, Villalobos E, Masri M, Lombardero G, MartineVelasquillo C, Meza AO, Guevara V, Ibarra LG. Follow­up of a new arthroscopic technique for implantation of matrix­encapsulated autologous chondrocytes in the knee. Arthroscopy. 2014 Jun;30(6):715­ 23. doi: 10.1016/j.arthro.2014.02.032.
9. Landa­Solís C, Vázquez­Maya L, Martínez­Pardo ME, Brena­Molina AM, Ruvalcaba E, Gómez R, Ibarra C, Velasquillo C.Use of irradiated human amnion as a matrix for limbal stem cell culture. Cell Tissue Bank. 2012 Mar;14(1):77­84. online. marzo 2013 impreso.
10. Metcalfe, A. D. y Ferguson, M. W. J. Tissue engineering of replacement skin: the crossroads of biomaterials, wound healing, embryonic development, stem cells and regeneration. Journal of the Royal Society Interface. UK.2007: The Royal Society, vol. 4, no. 14, pp. 413–437.
11. Sesman Ana, Ruvalcaba Erika, Herrera Arturo, Sánchez Guerrero Sergio, Lecona Hugo, Baena­Ocampo Leticia, Solís Lilia, Ávila Héctor, García de la Puente Silvestre, Vargas Bertha, Guerrero Xochitl, Velasquillo Cristina*. Morphological study of bone cranial in athymic mice Int. J. Morphol. 31 (1):321­328, 2013.
12. Shamis Y., Hewitt KJ.Fibroblasts derived from human embryonic stem cells direct development and repair of 3D human skin equivalents. Stem Cell Research Therapy.2011. vol 2, no 1, pp. 1-12.
13. Sukari Halim, A., Lye Khoo, T. y Yussof, Jumaat Mohd. . Biologic and synthetic skin substitutes: An overview. In Indian Journal of Plastic Surgery. India: Medknow Publications And Media Pvt. 2010 vol. 43, no. 3, sup. 1, pp. 23-28.
14. Tamay de Dios L, Ibarra C. Velasquillo C. Fundamentos de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y de la PCR en tiempo real. Investigación y Discapacidad.2013