Encabezado Facultad de Ciencias
Presentación

Biología (plan 1997) 2017-2

Segundo Semestre, Biología Molecular de la Célula I

Grupo 5300, 25 lugares. 25 alumnos.
Profesor Alicia Sánchez Izquierdo mi 7:30 a 10:30 S3
Profesor Felipe Alcántara Sánchez sá 7:30 a 10:30 Laboratorio de Prácticas de Biología Molecular de la Célula I

 

Para acreditar el curso, es necesario aprobar Teoría y Laboratorio.

Teoría: 45 %

Laboratorio: 45 %

Examen departamental: 10 %

CALENDARIO DE ACTIVIDADES DE LABORATORIO

Asignatura

BMC I

Grupo

5300

Profesor

Felipe Alcántara Sánchez

Horario

Sábado 7:30-10:30

Sem

Fecha propuesta

Fecha ajustada

Actividad

Manual

Tareas

1

4-feb-17

Presentación. Repaso sobre soluciones, pH y amortiguadores

1 y 2

2

11-feb-17

Teoría: Mezclas y concentración; Resolución de problemas

3 y 4

3

18-feb-17

Práctica 1A: calibración, mediciones, precisión y exactitud.

Revisión de ejercicios: soluciones, concentración y pH

Instructivo proporcionado por el profesor

5 y 6

4

25-feb-17

Práctica 1B: concentración, soluciones y pH.

Instructivo proporcionado por el profesor

7

5

4-mar-17

Preparación de soluciones

Pr. 2; pag. 25

8

6

11-mar-17

Purificación de caseína

Pr. 3; 48

9 y 10

7

18-mar-17

Determinación de proteínas

Pr. 4; pag. 52

11

8

25-mar-17

Electroforesis de proteínas

Pr. 5; pag. 58

12

9

1-abr-17

Cinética enzimática

Pr. 6; pag. 68

13

10

8-abr-17

Examen 1 (proteínas)

11

15-abr-17

12

22-abr-17

Medios de cultivo

Pr. 8; pag. 90

14 y 15

13

29-abr-17

MiniPrep

Pr. 9; pag. 95

16 y 17

14

6-may-17

Transformación

Pr. 10; pag. 102

18

15

13-may-17

Escena del crimen

Pr. 12; pag. 113

19

16

20-may-17

Desechos de residuos

Pr. 13; pag. 117

20

17

27-may-17

18

3-jun-17

Primera Vuelta: Examen 2

19

10-jun-17

Segunda Vuelta: Examen final

TAREAS

  1. Mapa mental soluciones acuosas.

  2. Formulario concentraciones.

  3. Teorías ácido-base (tabla comparativa).

  4. Ecuación de Henderson-Hasselbalch (qué significa cada término y para qué se usa)

  5. Cuadro sinóptico: ¿Qué es un amortiguador? ¿Cómo se define pH?

  6. Definiciones de: medición, exactitud, precisión.

  7. Tabla comparativa sobre mezclas acuosas: soluciones, suspensiones y coloides.

  8. Cálculos para la preparación de todas las soluciones del manual (Práctica 2)

  9. Cuadro sinóptico de “What is a protein?” basado en el video: https://youtu.be/qBRFIMcxZNM; y el archivo: http://cdn.rcsb.org/pdb101/learn/resources/what_is_a_protein.pdf

  10. Cuadro sinóptico Métodos de purificación de proteínas: 1) precipitación isoeléctrica, pI y concepto de precipitación; 2) Salting out (fraccionamiento con sulfato de amonio; 3) Centrifugación; 4) Filtración; 5) Cromatografía (de intercambio iónico y de afinidad); 6) Filtración en gel.

  11. Tabla comparativa Métodos de cuantificación de proteínas (principio general y sensibilidad de cada método): 1) Biuret; 2) Lowry; 3) Bradford; 4) Absorción UV.

  12. Mapa conceptual Principios de la electroforesis en gel de poliacrilamida con dodecil sulfato de sodio (SDS-PAGE).

  13. Mapa conceptual Fundamentos de la cinética enzimática: 1. ¿Qué es y qué significado tiene la Km? 2. ¿Qué representa la Vmax? 3. ¿Cuál es la ecuación de Michaelis-Menten? 4. ¿En qué consisten los métodos de Lineweaver-Burke, Eadie-Hofstee y para qué se usan?. Diagrama de flujo

  14. Cuadro sinóptico Crecimiento microbiano: fases. Tiempos de duplicación: significado y valores aproximados para E. coli

  15. Antibióticos: qué son, de dónde se obtienen y cómo actúan.

  16. Explicación sobre la estructura de las moléculas de DNA, basada en Watson, J., & Crick, F. Genetical implications of the structure of deoxyribonucleic acid. Nature 171, 964 (1953), y un libro de edición reciente.

  17. Cuestionario: 1. ¿Qué es un plásmido? 2. ¿De dónde se obtienen? 3. ¿Cuál es su abundancia en la célula? 4. ¿Qué es un vector de clonación? 5. Describir las propiedades de un plásmido comparado con otros vectores. 6. ¿Cuáles son los principales contaminantes durante la purificación de un plásmido? 7. ¿Cuáles son los fundamentos de la MiniPrep?

  18. Cuestionario ¿Qué es la transformación? ¿Cuáles otros métodos de transferencia de información genética existen?

  19. Mapa conceptual ¿Qué son las enzimas de restricción? Resumen Fundamentos de la técnica de RFLP

  20. Revisión sobre algún protocolo de Eliminación de desechos y residuos, con referencias diferentes al manual.

EVALUACIÓN

Reportes (equipo) 15 %

Tareas 10 %

Exámenes 10 %

Diagramas de flujo 5 %

Bitácora 5 %

  • Entrada al laboratorio con bata y diagrama de flujo de la actividad a la mano.

  • No hay reposición de examen.

  • Los reportes se deben entregar impresos una semana después de la práctica.

  • Asistencia mínima para acreditar: 80 %

 


Hecho en México, todos los derechos reservados 2011-2016. Esta página puede ser reproducida con fines no lucrativos, siempre y cuando no se mutile, se cite la fuente completa y su dirección electrónica. De otra forma requiere permiso previo por escrito de la Institución.
Sitio web administrado por la Coordinación de los Servicios de Cómputo de la Facultad de Ciencias. ¿Dudas?, ¿comentarios?. Escribenos. Aviso de privacidad.